DNA提取的幾種方法
(1).濃鹽法
利用RNP和DNP在電解溶液中溶解度不同,將二者分離,常用的方法是用1M 氯 納提取化鈉抽提,得到的DNP粘液與含有少量辛醇的 氯仿一起搖蕩,使乳化,再離心除去蛋白質(zhì),此時(shí)蛋白質(zhì)凝膠停留在水相及氯仿相中間,而DNA位于上層水相中,用2倍體積95%乙醇可將DNA 鈉鹽沉淀出來(lái).
也可用0.15 MNaCL液反復(fù)洗滌細(xì)胞破碎液除去RNP,再以1MNaCL提取脫氧核糖蛋白,再按氯仿---異醇法除去蛋白.
兩種方法比較,后種方法使核酸降解可能少一些.
以稀鹽酸溶液提取DNA 時(shí),加入適量去污劑,如SDS可有助于蛋白質(zhì)與DNA 的分離.在提取過程中為抑制組織中的DNase對(duì)DNA 的降解作用,在氯化鈉溶液中加入檸檬酸鈉作為金屬離子的烙合劑.通常用.15MNaCL,0.015M檸檬鈉,并稱SSC溶液,提取DNA.
(2).陰離子去污劑法:
用SDS或二甲苯酸鈉等去污劑使蛋白質(zhì)變性,可以直接從生物材料中提取DNA .由于細(xì)胞中DNA與蛋白質(zhì)之間常借靜電引力或配位鍵結(jié)合,因?yàn)殛庪x子去污劑能夠破壞這種價(jià)鍵,所以常用陰離子去污劑提取DNA.
(3).苯酚抽提法:
苯酚作為蛋白變性劑,同時(shí)抑制了DNase的降解作用.用苯酚處理勻漿液時(shí),由于蛋白與DNA 聯(lián)結(jié)鍵已斷,蛋白分子表面又含有很多極性基團(tuán)與苯酚相似相溶.蛋白分子溶于酚相,而DNA溶于水相.離心分層后取出水層,多次重復(fù)操作,再合并含DNA 的水相,利用核酸不溶于醇的性質(zhì),用乙醇沉淀DNA .此時(shí)DNA是十分粘稠的物質(zhì),可用玻璃漫漫繞成一團(tuán),取出.此法的特點(diǎn)是使提取的DNA保持天然狀態(tài) .
( 4).水抽提法:
利用核酸溶解于水的性質(zhì),將組織細(xì)胞破碎后,用低鹽溶液除去RNA,然后將沉淀溶于水中,使DNA充分溶解于水中,離心后收集上清液.在上清中加入固體氯化鈉調(diào)節(jié)至2.6M.加入2倍體積95%乙醇,立即用攪拌法攪出.然后分別用66% 80%和95%乙醇以及丙銅洗滌,最后在空氣中干燥,既得DNA樣品.此法提取的DNA中蛋白質(zhì)含量較高,故一般不用.為除蛋白可將此法加以改良,在提取過程中加入SDS.
DNA的提取方法有7種:酚抽提法、甲酰胺解聚法、玻璃棒纏繞法、異丙醇bai沉淀法、表面活性劑快速制備法、加熱法快速制du備、堿變性快速制備。
DNA的提取原則
1、保證核酸一級(jí)結(jié)構(gòu)的完整性;
2、核酸樣品中不應(yīng)存在對(duì)酶有抑制作用的有機(jī)溶劑和過高濃度的金屬離子;
3、其他生物大分子如蛋白質(zhì)、多糖和脂類分子的污染應(yīng)zhi降低到最低程度;
4、其他核酸分子,如RNA,也應(yīng)盡量去除。
擴(kuò)展資料
提取daoDNA的注意事項(xiàng)
1、各操作內(nèi)步驟要輕柔,盡量減少DNA的人為降解。
2、注意防止非核酸類成分干擾。
3、要減少DNA的降解,促進(jìn)DNA與蛋白等的分相及DNA沉淀。
4、提取DNA過程中所用到的試劑和器材容要通過高壓烤干等辦法進(jìn)行無(wú)核酸酶化處理。
5、所有試劑均用高壓滅菌雙蒸水配制。
參考資料來(lái)源:百度百科-dna提取
提取DNA主要有SDS和CTAB法,其實(shí)提取效果的好壞主要看提取的對(duì)象是什么樣的材料,在提取之前一定要好好分析材料的特性,然后在設(shè)計(jì)實(shí)驗(yàn)步驟。
一)CTAB法
CTAB是一種去污劑,可溶解細(xì)胞膜,它能與核酸形成復(fù)合物,在高鹽溶液中(0.7 mol/L NaCl)是可溶的,當(dāng)降低溶液鹽濃度到一定程度(0.3 mol/L NaCl)時(shí),從溶液中沉淀,通過離心就可將CTAB與核酸的復(fù)合物同蛋白質(zhì)、多糖類物質(zhì)分開,然后將CTAB與核酸的復(fù)合物沉淀溶解于高鹽溶液,再加入乙醇使核酸沉淀,CTAB能溶解于乙醇。
(二)SDS法
利用高濃度的SDS,在較高溫度(55—65℃)條件下裂解細(xì)胞,使染色體離析,蛋白質(zhì)變性,釋放出核酸,然后采用提高鹽濃度及降低溫度的做法使蛋白質(zhì)及多糖雜質(zhì)沉淀(最常用的是加入5M的KAc于冰上保溫,在低溫條件下KAc與蛋白質(zhì)及多糖結(jié)合成不溶物),離心除去沉淀后,上清液中的DNA用酚/氯仿抽提,反復(fù)抽提后用乙醇沉淀水相中的DNA。
以下是在提取熱帶水果DNA時(shí)設(shè)計(jì)的兩種不同方法步驟,對(duì)比起來(lái)CTAB法好,在禾本科植物效果差不多!
1、CTAB法
1) 在所需量的CTAB抽提液中加入2-巰基乙醇,使終濃度達(dá)2%(v/v)。將此溶液預(yù)熱至65℃。
對(duì)于每克新鮮的葉組織大約需要4ml的2-ME/CTAB抽提液。
2) 用液氮(-196℃)或干冰(-78℃)冷卻粉碎器/勻漿器,將0.5 g植物組織粉碎成細(xì)粉,然后將組織轉(zhuǎn)移到2.0 ml離心管。
3) 加入800 μl預(yù)熱的2-Me/CTAB,混合使之充分濕潤(rùn),于65℃溫育20 min,不時(shí)顛倒混勻。
4) 待冷至室溫后,加入800 μl氯仿/異戊醇(24:1),顛倒混勻至溶液呈乳濁狀----但不要振蕩。25℃,10000 rpm離心10 min。
5) 上清(~700 μl)轉(zhuǎn)移至另一干凈的離心管中,加入5 μl RNaseA貯液,37℃溫育30 min。
6) 加入700 μl氯仿/異戊醇,顛倒混勻,25℃,10000 rpm離心10 min。
7) 上清(~600 μl)轉(zhuǎn)移至另一干凈的1.5 ml離心管中,加入600 μl異丙醇,顛倒混勻,室溫或-20℃放置20 min。
8) 25℃,12000 rpm,離心10 min,收集沉淀。
9) 去上清,加1 ml70%乙醇洗滌沉淀兩次。(25℃,12000 rpm,離心10 min)
10)涼干DNA,溶于50 μl ddH2O,4℃保存?zhèn)溆谩?/p>
2、SDS法
① 將0.3 g植物材料于液氮速凍,然后在研缽中將其磨碎,將粉末轉(zhuǎn)至2 ml離心管中。
② 加入1.2 ml預(yù)熱至65℃的提取緩沖液(其中加入3 μl β—巰基乙醇,增加DNA的穩(wěn)定性),置65℃水浴中放置30分鐘,不時(shí)顛倒混勻。
③ 加入0.45 ml 5M的醋酸鉀,混勻,冰浴20分鐘,在10000 rpm離心20 min。需要的話,Miracloth紗布過濾除去沉淀,上清液轉(zhuǎn)入另一離心管中。
④ 加入等體積氯仿:異戊醇(24:1),輕輕顛倒混勻,12000 rpm離心15 min。
⑤ 轉(zhuǎn)移上清液到另一新離心管中,加5 μl RNaseA貯液,37℃溫育30 min。
⑥ 加入等體積氯仿:異戊醇(24:1),輕輕顛倒混勻,12000 rpm離心15 min。
⑦ 轉(zhuǎn)移上清液到另一新離心管中,加入0.7V異丙醇,輕輕顛倒混勻,-20℃放置30分鐘沉淀核酸。
⑧ 25℃,12000 rpm,離心10 min,收集沉淀。
⑨ 棄上清,70%乙醇洗兩次。
⑩ 涼干DNA,溶于50 μl ddH2O,4℃保存?zhèn)溆谩?/p>
你是說DNA 的提取方法么?現(xiàn)在正在做這方面試驗(yàn),希望能幫得上你
1) 研磨:取樣少許置入1.5ml離心管中,以移液槍加入消化緩沖液600μl,沖入液氮或少許石英砂研磨至澄清。
2) 水浴:水浴溫度55℃,水浴時(shí)間3-5h左右
3) 酚抽提:每支離心管中加入600μl Tris飽和酚,輕柔的搖晃使固液混合充分。離心機(jī)4℃,8000r/min離心10min,以移液槍小心的將上清液取出至新管,重復(fù)步驟一次
4) Cl抽提:向抽提出的上清液中加入等體積的Cl液,輕柔的搖晃使充分混勻,高速冷凍離心機(jī)4℃,10000r/min離心10min,以液槍小心的將上清液取出。
5) DNA沉淀:向抽提的上清液中加入2倍體積的無(wú)水乙醇,并輕柔的搖晃使溶液充分,再置于-20℃冰箱中保存10min后高速冷凍離心機(jī)4℃,12000r/min離心5min,小心傾去乙醇,可見DNA沉淀物。
6) DNA 洗滌:向在留有DNA沉淀物的離心管中加入-20℃冰箱中保存的70%乙醇500μl,后離心機(jī)4℃,12000r/min離心5min,小心傾去乙醇后可見離心管底白色小圓片狀的DNA提取物。將離心管倒置于無(wú)菌室內(nèi)室溫至干燥。
7) DNA溶解:向干燥好的DNA提取物中加入30μl去離子水,4℃冰箱保存
關(guān)于DNA的提取方法在《分子克隆》一書中有詳細(xì)介紹,其中最常用的質(zhì)粒提取方法包括: SDS堿裂解法制備質(zhì)粒DNA煮沸裂解法制備質(zhì)粒DNA牙簽法小量制備質(zhì)粒DNASDS裂解法提取質(zhì)粒DNA 這其中SDS堿裂解法又是最常使用的提取方法。
當(dāng)然針對(duì)不同組織樣品DNA的提取方法是不同的,具體還是要參考《分子克隆》等工具書。 另外,針對(duì)不同組織的DNA樣品,就是都有很多成熟的試劑盒可以使用。
如果不是大批量使用或者經(jīng)費(fèi)充足的話,可以考慮購(gòu)買試劑盒,一般可以提取到更高質(zhì)量的DNA,并且也可以節(jié)約不少自己摸索的時(shí)間。
DNA的提取方法有7種:酚抽提法、沉淀法、表面活性劑快速制備法、加熱法快速制備、堿變性快速制備。
DNA的提取原則 1、保證核酸一級(jí)結(jié)構(gòu)的完整性; 2、核酸樣品中不應(yīng)存在對(duì)酶有抑制作用的有機(jī)溶劑和過高濃度的金屬離子; 3、其他生物大分子如蛋白質(zhì)、多糖和脂類分子的污染應(yīng)降低到最低程度; 4、其他核酸分子,如RNA,也應(yīng)盡量去除。 擴(kuò)展資料提取DNA的注意事項(xiàng) 1、各操作步驟要輕柔,盡量減少DNA的人為降解。
2、注意防止非核酸類成分干擾。 3、要減少DNA的降解,促進(jìn)DNA與蛋白等的分相及DNA沉淀。
4、提取DNA過程中所用到的試劑和器材要通過高壓烤干等辦法進(jìn)行無(wú)核酸酶化處理。 5、所有試劑均用高壓滅菌雙蒸水配制。
參考資料來(lái)源:百度百科-dna提取。
標(biāo)準(zhǔn)檢體︰
1. 口腔黏膜【以本中心提供之口腔棉棒采檢,棉棒須干燥保存。】
2. 血液【以紫頭EDTA采血管采集2-3ML,室溫保存寄送即可。 】
特殊檢體︰
1. 血漬【止血棉球,包過傷口的繃帶,沾血的紗布或衛(wèi)生紙,請(qǐng)裝入全新紙袋中。】
2. 耳用棉花棒【棉花棒,請(qǐng)裝入全新紙袋中?!?/p>
3. 手或腳指甲【必需剪下接近皮膚部份,請(qǐng)裝入全新紙袋中。】
4. 梳子【必需為同一人使用之梳子,請(qǐng)裝入全新紙袋中?!?/p>
5. 精液【保險(xiǎn)套,內(nèi)衣,衣服,等等……(1)液體精液: 將精液樣本沾到干凈的樣本收集器上(棉花棒,由本中心提供).等它干約一個(gè)小時(shí)左右. (2)干的精液:先將樣本收集器沾蒸餾水用濕,再將沾精液沾到樣本收集器上.同樣等它干約一個(gè)小時(shí)左右,請(qǐng)裝入全新紙袋中。】
6. 牙齒【臼齒,前臼齒,或犬齒 (嬰兒齒無(wú)法使用),請(qǐng)裝入全新紙袋中?!?/p>
7. 牙刷【晾干牙刷約30-60分鐘,請(qǐng)放入密封保鮮袋中(全新袋子)。】
8. 牙簽【請(qǐng)使用時(shí)不要用手觸碰到,請(qǐng)裝入全新紙袋中?!?/p>
9. 使用過的手帕【鼻涕,請(qǐng)裝入全新紙袋中?!?/p>
10. 使用過的衛(wèi)生紙【鼻涕,請(qǐng)裝入全新紙袋中?!?/p>
11. 絨毛【10mg請(qǐng)?zhí)峁┠赣H檢體供比對(duì)之用?!?/p>
12. 羊水【10ml請(qǐng)?zhí)峁┠赣H檢體供比對(duì)之用。】
13. 組織【5mm冷凍或冷藏保存,或置于PBS buffer中冷藏保存。】
14. 臍帶血【1ml請(qǐng)取得母親血液供比對(duì)之用。】
15. 頭發(fā)【6-10根,需有發(fā)根(毛囊)?!?/p>
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